DNA序列直接测序完之后怎么分析SNP位点

.sanger太厉害了,核酸和蛋白质测序的sanger都有研究一般sanger测序法就是指的目前最常见的DNA测序技术sanger对蛋白质测序的贡献则是蛋白质N端测序技术,里面涉及到一种关键试剂叫做s

能不能构建进化树来分析同源性呢?我做过NJ树MP树之类的,可以通过与其它近缘生物的序列一起构建系统发育树来比较,不过我做的都是一个属内的或者是两个相近的属的

是否有引物序列要看你是如何测序的,如果短片段700个碱基以内双向测序且测序结果很好的情况下,应该能看到两端引物序列,如果是单向测序会看到一端引物序列；长片段一般是看不到引物序列的.你说的切除引物序列是

是指他们的亲缘性吧?比较他们的碱基互补程度越高就越接近直接比较他们的相似性的话就看他们所含的碱基还有排列顺序了

怎么写的都不清楚大致上说就是为了转录的方便和识别的精确,因此有许多的特征.首先,在转录的上游有GC框,CAAT框,TATA框.在转录区,按三联密码子编码,不同的三联密码子对应20种不同的氨基酸残基.三

按照碱基互补配对原则,A-UC-GG-CT-A左侧是DNA,右侧是RNA.然后依次写出RNA上的碱基即可.若是计算百分含量,则对一特定碱基,其占DNA双链的比例与对应（与之配对）的RNA所占的比例相等

定点突变具体想了解的话给你几个链接

先找到DNA序列的ORF,从ATG开始,三个碱基一组,用密码子表对比进行翻译就好了,到终止密码子结束.很多生物软件都有直接翻译的功能的.

DNA序列测定技术（双脱氧末端终止法）使用须知(张宏、李振甫)一、背景介绍目前最常用的手工DNA序列测定技术,仍然是Sanger等(1977)提出的酶法,也称双脱氧末端终止法.这种方法生成相互独立的若

不是噢知道序列也要保存dna保存的好是可以永久存在的.一个人的基因约有30亿个碱基对以目前的技术,只能合成很短的碱基对,大概在500以内合成人的目前不可能,工作量太大.相反,保存还是比较容易的因为dn

原核：5'有对应RNASD序列的片断,包含多个ORF真核：ORF中没有内含子,3'有对应Poly(A)的TTTTTTT,另外：不管是原核还是真核,其两端一定有5'UTR及3'UTR,这也是我们要作RA

由于没起始密码子,所以从左往右写就行,正好30个碱基这道题有两种答案1、如果按它是编码DNA,就写出它的另一条链的碱基序列,然后对照密码子表写出氨基酸序列2、如果按它是非编码DNA,就直接查表写出氨基

这问题都上百度知道来问了,你也是生物专业的研究生吧.PrimerPremier5这个软件设计引物用很不错的.

根据这两段保守序列设计兼并引物,进行PCR扩增,可以再进行RACEPCR扩得全长.至于如何判断,我想使用的是RACEPCR的话应该就是全长.

就是A,T,C,G的顺序啊,那么多的碱基有很多种排列组合,那就是碱基的序列.对于每一个特定的DNA说,它上面的AGCG的那种特定的排列组合,就是它的序列.

你的问题出在变量名重了,所以无法计算如果你的原始变量序列是x,则其差分序列得重新命名,如x1命令：datax1——创建一个名为x1的新的序列组x1=D(x)——计算原始变量序列的一阶差分序列

1常见单一限制性酶切位点：HindIII495；NdeI453；2.1〉提取基因组DNA；2.2〉用实验室常用的而序列上没有酶切位点的几种酶分别酶切基因组DNA,如EcoRI/BamHI/SacI/X

ncbi上就可以啊,你把你的rna的序列复制进去,点击转换就行了.现在生物信息学已经越来越凶残了.http://www.ncbi.nlm.nih.gov/

不是.大多数真核生物的mRNA3’末端都有由100~200个A组成的Poly(A)尾巴.Poly(A)尾不是由DNA编码的,而是转录后的前mRNA以ATP为前体,由RNA末端腺苷酸转移酶,即Poly(

运用DNASTAR软件把DNA序列反向互补,然后再用引物去匹配就可以了