微卫星琼脂糖电泳图为何出现多条带

主要是看tris的缓冲范围,Tris缓冲液的有效缓冲范围在pH7.0到9.2之间,算是中性和偏碱性.DNA肯定是要带负电荷的,所以电泳的时候才会向正极跑.电泳槽一般都会标明正负极的,只要把电源和电泳槽

1.你需要知道琼脂糖胶的分辨率是有限的,通常用的1%的琼脂糖胶是不能有效分辨相差100bp以内的片段的（这一点不能说明你的问题）；2.你还需要知道基因组是很大的,通常都是以M为单位的,而琼脂糖胶分辨最

一般购买纯化试剂盒进行纯化.以Takara公司的试剂盒为例：1.使用TAE缓冲液或TBE缓冲液制作琼脂糖凝胶,然后对目的DNA进行琼脂糖凝胶电泳.2.在紫外灯下切出含有目的DNA的琼脂糖凝胶,用纸巾吸

1）质粒上没有这两种酶的酶切位点（或操作失误,试验失败）2）质粒上只有一种酶的酶切位点或两个酶的位点非常接近（

主要是看tris的缓冲范围,Tris缓冲液的有效缓冲范围在pH7.0到9.2之间,算是中性和偏碱性.DNA肯定是要带负电荷的,所以电泳的时候才会向正极跑.

不可以,常用tae再答：可以用绣花已定再答：但是是致癌物，所以小心再问：为什么呀？tris-hcl说明书说可以用于核酸电泳？溴化乙锭能否用无毒的物质代替？再答：可能是可以做某种配方的一部分组分吧，单独

单酶切?双酶切?一个位点?两个位点?单酶切一个位点,完全一条带,不完全两条带,单酶切两个位点,完全,两条带,不完全,三条带,双酶切,完全两条带,不完全,三条带再问：若是单酶切两个位点，出现一条带是什么

蛋白质,另外可能还有糖类之类的,如糖蛋白,多糖,所以整体黏糊糊的,跑不出点样空!

凝胶电泳或称胶体电泳是一大类技术,被科学工作者用于分离不同物理性质（如大小、形状、等电点等）的分子.凝胶电泳通常用于分析用途,但也可以作为制备技术,在采用某些方法（如质谱(MS)、聚合酶链式反应(PC

（三）根据蛋白质带电性质进行分离蛋白质在不同pH环境中带电性质和电荷数量不同,可将其分开.1、电泳法各种蛋白质在同一pH条件下,因分子量和电荷数量

我们实验室用的就是博凌科为的,感觉挺不错的,价格也不贵,这是他们的几种规格和相应的价格,货号：EP0101规格：5ml价格：40.00元货号：EP0102规格：10ml价格：65.00元货号：EP01

你说的SDS电泳实际上是SDS-PAGE,SDS只是蛋白变性剂,而凝胶是聚丙烯酰胺.SDS-PAGE和琼脂糖凝胶电泳使用的是完全不同的凝胶材料.SDS－PAGE采用的是聚丙烯酰胺,它是靠化学反应形成的

多大浓度的胶?加样孔在上面还是下面?marker多大,尤其最亮那条带是多少?另外,marker好像是在最右边啊.再问：0.8的胶。写错了，从左向右。marker最右边。加样孔在上面。只求能分析清楚每个

加样缓冲液中有buffer染料,给核酸染色,指示作用,电泳缓冲液与制胶缓冲液是一样的,是1*TAE或5*TBE.

“从头拖到尾,另外一对引物就能做出来”说明不是引物之间形成二聚体,而是第一对引物的设计有问题（特异性很差）.如果一定要扩增那个区,建议引物的位置向两边放一放.如果你没有好的设计软件,建议到Primer

应该模板量太大了,可以稀释一下模板；也可调整一下PCR体系,凭经验,如果模板纯度很高,取0.1微就足够了

阴性对照的actin可能是从旁边的加样孔漏过去的,也可能是加样的时候没换枪头带过去的,不要太在意这个阴性对照.　　gene1结果似乎不错,至少阴性对照比actin好,不过好像也漏过去一些.　　gene

琼脂糖电泳一般用来鉴定dna,蛋白质要用聚丙烯酰胺,这是规矩

RNA在提取过程中和保存期间非常容易被RNA酶降解,提取过程得非常小心,保存期间也得加RNA酶抑制剂,不知道紫外分光光度计检测时含量和纯度如何,及时被降解,也应该有拖尾才对,可能是浓度太低,建议加大上

如果引物序列,PCR体系,程序,以及所用的物种都和文献一样的话,可考虑两种情况：1.你所参考的文献真实度有待考量.2.你所提取的该物种DNA质量不好.需重新提纯.